какие бактериологические красители наиболее часто применяют в лабораторной практике

Руководство к практическим занятиям по микробиологии. Руководство к практическим занятиям по микробиологии ( малый практикум) Ульяновск 2003 удк 619 616. 9

ЗАНЯТИЕ 2. Бактериологические краски. Простой метод окрашивания.

Цель занятия. Овладеть методикой приготовления мазка-препарата для микроскопии из микробной взвеси. Ознакомиться с методами приготовления красящих растворов. Отработать методику простого метода окраски приготовленных препаратов.

МИКРОСКОПИЯ БАКТЕРИЙ В ОКРАШЕННОМ ВИДЕ

На предметном стекле делают мазок, высушивают, фиксируют его и после этого окрашивают.

Приготовление мазков. Исследуемый материал распределя­ют тонким слоем по поверхности предметного хорошо обез­жиренного стекла.

Мазки готовят из культур микробов, патологического ма­териала (мокрота, гной, моча, кровь и др.) и из органов трупов. Приготовление препарата для микроскопии складывается из следующих этапов:

1.Приготовление мазка на обезжиренном предметном стекле. 2.Высушивание препарата. 3.Фиксация мазка.

В правильно приготовленном препарате микробные клетки должны быть расположены в один слой.

Техника приготовления мазков определяется характером исследуемого материала.

1. Приготовление мазков из микробных культур с жидкой питательной среды и из жид­кого патологического материала (моча и др.). Маленькую каплю исследуемой жидкости на­носят бактериальной петлей на предметное стекло и круго­выми движениями петли распределяют равномерным слоем в виде кружка диаметром в копеечную монету.

3. Приготовление толстой капли. На середину предметного стекла пастеровской пипеткой наносят каплю крови или прикладывают стекло непосредственно к капле крови, выступающей из пальца. Нанесенную на стекло кровь размазывают бактериальной петлей так, чтобы диаметр об­разующегося мазка соответствовал величине копеечной мо­неты. Стекло оставляют в горизонтальном положении до подсыхания крови. Кровь в “толстой капле” распределяется не равномерно, образуя неровный край.

4. Приготовление мазка из вязкого мате­риала (мокрота, гной). Мокроту или гной, нанесенные на предметное стекло ближе к узкому краю, накрывают другим предметным стеклом. Стекла слегка придавливают друг другу. После этого свободные концы стекол захватывают 1 и 2 пальцами обеих рук и разводят в противоположные стороны так, чтобы при движении оба стекла плотно прилегали друг к другу. Получаются мазки с равномерно распределённым материалом, занимающим большую часть.

5. Приготовление мазка из культур с плотных питательных сред. На середину чистого, хорошо обезжиренного стекла наносят каплю водопроводной воды, в нее вносят бактериальную петлю с небольшим количеством исследуемой микробной культуры так, чтобы капля жидко­сти стала слегка мутноватой. После этого излишек микроб­ного материала на петле сжигают в пламени горелки и при­ступают к приготовлению мазка по описанному выше способу.

6. Приготовление мазков из органов и тканей. Поверхность органа с целью обеззараживания прижигают накаленными браншами пинцета, делают по этому ме­сту надрез и из глубины остроконечными ножницами вырезают небольшой кусочек ткани, который помещают между двумя предметными стеклами. Далее поступают так же, как при приготовлении мазка из гноя и мокроты. Если ткань органа плотная, то из глубины разреза делают скальпелем соскоб. Полученный при соскабливании материал распределя­ют тонким слоем по поверхности стекла скальпелем пли бактериальной петлей. Для изучения взаимного расположения элементов ткани и находящихся в ней микроорганизмов делают мазки-отпе­чатки. Для этого вырезанный из середины органа небольшой кусочек ткани захватывают пинцетом и прикладывают по­верхностью среза к предметному стеклу несколько раз по­следовательно, получая, таким образом, ряд мазков-отпе­чатков.

Рис. 4 Схема приготовления препарата-мазка

Высушивание и фиксирование мазков. Приготовленный на предметном стекле мазок высушивают и после высыхания фиксируют. При фиксировании мазок закрепляется на поверхности предметного стекла, и поэтому при последующей окраске препарата микробные клетки не смываются. Кроме того, убитые микробные клетки окрашиваются лучше, чем живые. Различают физический способ фиксации, в основу которого положено воздействие высокой температуры на микробную клетку, и химические способы, предусматривающие применение средств, вызывающих коагуляцию белков

Физический способ фиксации. Предметное стекло с препаратом берут пинцетом или 1 и II пальцами правой руки за ребра мазком кверху и плавным движением проводят 2—3 раза над верхней частью пламени горелки. Весь процесс фиксации должен занимать не более 2 с. Надежность фиксации проверяют следующим простым приемом: свободную от мазка поверхность предметного стекла прикла­дывают к тыльной поверхности левой кисти. При правиль­ном фиксировании мазка стекло должно быть горячим, но не вызывать ощущения ожога.

Химический способ фиксации. Для фиксации мазков применяют химические вещества такие как: Безводный метиловый спирт. Этиловый (винный) спирт 96%. Жидкость Никифорова (смесь спирта и наркозного эфира в соотношении 1:1). Жидкость Карнуа (спирта 96% 60 мл, хло­роформа 30 мл, уксусной кислоты ледя­ной 10 мл)

Предметное стекло с высушенным мазком погружают в склянку с фиксирующим веществом и затем высушивают на воздухе.

Техника окраски мазков. Для окраски мазков пользуются растворами красок или красящей бумагой, что предложено А. И. Синевым. Простота приготовления, удобство применения, а также возможность хранения красящих бумаг в течение долгого времени явились основанием для широкого их использования при различных способах окраски.

Окраска мазков красящей бумагой. На высу­шенный и фиксированный препарат наносят несколько ка­пель воды, кладут окрашенные бумажки величиной 2х2 см. В течение всего времени прокрашивания бумага должна оставаться влажной и плотно прилегать к поверхности стекла. При подсыхании бумагу дополнительно смачивают водой. Продолжительность окрашивания мазка определяется мето­дом окраски. По окончании окраски бумагу осторожно сни­мают пинцетом, а мазок промывают водопроводной водой и подсушивают на воздухе или фильтровальной бумагой.

Окраска мазков растворами красителей. На высушенный и фиксированный препарат пипеткой наносят краситель в таком количестве, чтобы он покрывал весь ма­зок. При окраске мазков концентрированными растворами красителей (карболовый фуксин Циля, карболовый генциановый или кристаллический фиолетовый) окрашивание произ­водят через фильтровальную бумагу, задерживающую части­цы красителя: на фиксированный мазок кладут полоску фильтровальной бумаги и на нее наливают раствор краси­теля.

ПРОСТЫЕ МЕТОДЫ ОКРАСКИ МАЗКОВ

Краски, применяемые в микробиологической практике. Для окрашивания микробов используют анилиновые красители (основные, кислые и нейтральные). Микроорганизмы лучше окрашиваются основными красками. Для окраски препаратов готовят спиртовые, водно-спиртовые и водные растворы. В некоторых случаях добавляют в качестве протравы карболовую кислоту, щелочь и др. Наиболее часто употребляемыми красителями являются следующие:

При простом методе окраски на фиксированный мазок наливают несколько капель какого-либо спиртоводного или водного раствора красок на 1—2 минуты; чаще всего для этой цели применяется фуксин 1: 10 или леффлеровская метиленовая синька. Затем краску смывают дистиллированной водой и мазок обсушивают между двумя полосками фильтровальной бумаги. Обычно Фуксином I: 10 красят 10—30 секунд, а метиленовой синькой – 2-10 мин. Фуксин окрашивает мазки более интенсивно. А при окраске метиленовой синькой получаются нежные, более изящные препараты. Мазок после обсушивания фильтровальной бумагой должен быть совершенно сухим, в противном случае при соприкосновении оставшейся влаги с кедровым маслом образуется эмульсия и при микроскопии получится неясное изображение. Вообще же продолжительность окраски зависит от вида и качества красящего раствора, степени восприимчивости микроба к окраске и толщины мазка.

При простой окраске микробные тела воспринимают цвет применяемой краски так же интенсивно, как и ядра клеток; в то же время цитоплазма и весь фон мазка (если это не мазок из чистой культуры) окрашиваются в тот же цвет, но несколько бледнее. Фуксин и генцианвиолет относятся к более интенсивно окрашивающим краскам; метиленовая синька окрашивает зна­чительно бледнее. Восприятие окраски зависит не только от свойств красок, но и от свойств подвергаемых окраске микробов. Большинство микробов легко и быстро окрашивается водными или спиртоводными растворами красок.

Для повышения красящей способности воздействуют на краску высо­кой температурой (нагреванием) до появления паров (вплоть до кипения). Варьируя степень нагревания, можно получать различные степени силы окраски. Удлинение срока воздействия красящего раствора на объект также может в известной мере усилить степень окраски.

Мытье предметных и покровных стекол . Предметные и по­кровные стекла должны иметь абсолютно чистую поверхность и быть хорошо обезжиренными. Капля воды, нанесенная на обезжиренное стекло, растекается равномерно, а на плохо обезжиренном стекле распадается на мелкие капельки. Пред­метные и покровные стекла рекомендуется мыть и ополаскивать в резиновых перчатках, чтобы не загрязнять их жиром, находящимся на поверхности кожи. Стекла предметные и покровные, не бывшие в употребле­нии, моют в теплой мыльной воде и после споласкивания за­ливают смесью Никифорова. Если стекла, выну­тые через 2—3 дня из смеси Никифорова, сохраняют следы жира, их складывают в фарфоровую чашечку, заливают 2—5 % раствором гидрокарбоната натрия или едкого натра, ставят на слабый огонь и кипятят, считая от момента закипания воды, в течение 20—30 мин. После кипячения в щелочном растворе стекла ополаскивают проточной водопроводной во­дой, опускают на 10—15 мин в 5—10% раствор хлористо-водородной кислоты и затем промывают проточной водой. Предметные и покровные стекла, бывшие в употреблении, загрязненные краской и иммерсионным маслом, обрабатыва­ют следующим способом:

-опускают на 2 ч в концентриро­ванную серную кислоту или хромовую смесь, затем тщатель­но промывают проточной водопроводной водой;

-заливают 5% раствором гидрокарбоната натрия или щелочи (едкое ка­ли или едкий натр), ставят на слабый огонь и кипятит в те­чение 30—40 мин.

Источник

Тема 4 окраска бактерий с целью выявления спор, капсул, цитоплазматических включений. Методы обнаружения жгутиков. Метод прямого флуорохромирования бактерий

Цель занятия. Ознакомить студентов с методами обнаружения у бактерий спор, капсул, жгутиков, цитоплазматических включе­ний методом прямого флуорохромирования бактерий.

Оборудование и материалы. 24-часовая культура P. multocida на сывороточном МПА, культура В. cereus на МПА на стадии спо­рообразования; сенной настой, красители, предметные и по­кровные стекла, световые микроскопы.

Споры с большим трудом воспринимают красители, но проч­но удерживают их после окраски (рис. 15)

Рис. 15. Бациллы с различным располо­жением спор:

1 — вегетативная клетка; 2— субтерминаль­ное; 3 — центральное; 4— терминальное

На этой особенности спор основаны все методы их выявления. Для окрашивания спор применяют красители с протравителями (карболовый фуксин и др.) и подогревание, чтобы увеличить проницае­мость оболочки. Для разрыхления оболочки иногда перед окрас­кой препараты обрабатывают хромовой или другими неоргани­ческими кислотами.

Метод Мёллера. Фиксированный мазок обрабатывают 5%-м раствором хромовой кислоты при легком подогревании 10 мин, промывают водой, подсушивают фильтровальной бумагой. Затем на фильтровальную бумагу (1 см 2 ), помещенную на мазок, нано­сят карболовый фуксин и подогревают до появления паров, дают остыть, повторяют нагревание два-три раза. Общая экспозиция окрашивания карболовым фуксином 7 мин (мазок должен быть влажным). Бумажку с краской сбрасывают бактериальной пет­лей; не промывая водой, мазок обрабатывают 5%-м раствором серной кислоты 5. 7 с, после чего тщательно промывают водой и докрашивают метиленовым синим 3 мин. Препарат промывают водой и подсушивают фильтровальной бумагой.

Микроскопическая картина: споры окрашены в розово-крас­ный цвет, вегетативные клетки — в синий.

Метод Вальдмана..На фиксированный мазок наносят щелоч­ную синьку Леффлера и нагревают до кипения, дают остыть и промывают водой. Докрашивают 1%-м водным раствором нейт-ральрота 30 с, промывают водой, подсушивают.

Микроскопическая картина: споры синие, вегетативные клет­ки красные.

Метод Пешкова. Фиксированный мазок окрашивают метиле­новым синим с подогреванием до закипания, затем промывают водой и докрашивают 1%-м водным раствором нейтральрота 10 с. Препарат промывают водой, подсушивают.

Микроскопическая картина: споры синие, вегетативные клет­ки красные.

Метод Ауески. Нефиксированный мазок обрабатывают 0,5%-м раствором соляной кислоты 2. 3 мин при подогревании, затем промывают водой и фиксируют над пламенем. Окрашивают кар­боловым фуксином Циля при подогревании 7. 8 мин. Краску сливают и препарат обрабатывают 5%-м раствором серной кис­лоты 5. 7 мин, промывают водой и докрашивают метиленовым синим 4. 5 мин, после чего вновь промывают водой и подсуши­вают.

Микроскопическая картина: споры красные, вегетативные клетки синие.

Метод Шеффера-Фултона. Фиксированный мазок покрыва­ют фильтровальной бумагой, наливают 0,5%-й водный раствор малахитовой зелени и выдерживают 5 мин над кипящей водой, после чего промывают водой и окрашивают 2%-м водным ра­створом сафранина 30 с. Препарат промывают водой, подсуши­вают.

Микроскопическая картина: споры зеленые, вегетативные клетки красно-коричневые.

Выявление капсул бактерий. Капсула — это слизистое образо­вание, обволакивающее клетку и сохраняющее связь с клеточной стенкой. У большинства прокариот капсула построена из полиса­харидов гомо- или гетерополимерной природы. У некоторых ви­дов бактерий капсула содержит полипептид — полимер D-тяута-миновой кислоты. Вещество капсулы обычно воспринимает кра­сители слабее, чем другие клеточные компоненты, поэтому при специальных методах окраски можно дифференцировать капсулу от остальных структур. Многие виды патогенных бактерий обра­зуют капсулу, которая выполняет защитную функцию в основ­ном за счет снижения эффективности фагоцитоза (рис. 16).

Метод Михина. Препарат окрашивают щелочной синькой Леффлера с подогреванием до появления паров и затем выдер­живают еще 5. 6 мин (мазок должен быть влажным). Препарат промывают водой и подсушивают фильтровальной бумагой. Обычно используют старые растворы красителя, так как у них больше выражена способность к метахроматической окраске.

Микроскопическая картина: капсула розовая, клетки синие.

Метод Ольта. Фиксированный мазок окрашивают при подо­гревании 2%-м водным раствором сафранина, приготовленным ex tempore. Экспозиция окрашивания 1. 2мин. Затем промывают водой, подсушивают. На мазок наносят каплю воды, накрывают покровным стеклом.

Микроскопическая картина: капсула бледно-желтая, клетка красно-коричневая.

М етод Антони. Нефиксированный мазок обрабатывают 1%-м водным раствором кристаллвиолета 2 мин, после чего промыва­ют 20%-м водным раствором сульфата меди и подсушивают фильтровальной бумагой

Микроскопическая картина: капсулы сине-фиолетовые, клет­ки темно-синие.

Метод Романовского—Гимзы. Препарат, фиксированный в этаноле или жидкости Никифорова, кладут мазком вниз в чашку Петри с подставками (деревянные или стеклянные палочки). Под препарат наливают краску Романовского-Гимзы (15. 20 ка­пель краски на 10 мл дистиллированной воды). Выдерживают 15. 20 мин. Препарат промывают водой, подсушивают.

Микроскопическая картина: капсула розовая, клетка темно-синяя.

Метод Ребигера. Нефиксированный мазок окрашивают 15. 20 с раствором генцианвиолета в формалине (генцианвиолет— 15. 20 г, 40%-й раствор формалина — 100 мл, раствор от­стаивают, фильтруют). Препарат промывают водой, подсуши­вают.

Микроскопическая картина: капсула красно-фиолетовая, клетка темно-фиолетовая.

В мазках-отпечатках из тканей больного животного капсулированные клетки легко обнаружить благодаря контрастирующе­му фону, который образован плазмой и тканевыми элементами. Для имитации подобного фона при выявлении капсул у клеток бактериальных культур разработаны специальные методы ок­раски.

Метод Гисса. На предметное стекло наносят каплю нормальной сыворотки крови животного любого вида, петлей вносят в нее и суспендируют изучаемую культуру. Суспензию распределя­ют равномерным тонким слоем по поверхности стекла. Препарат фиксируют на пламени и окрашивают 0,1%-м водным раствором кристаллвиолета 1 мин. Мазок промывают 20%-м водным ра­створом сульфата меди, подсушивают фильтровальной бумагой.

Микроскопическая картина: капсула бледно-голубая, клетка темно-фиолетовая, фон фиолетовый.

Микроскопическая картина: капсула видна как светлый или розовый ободок вокруг темно-красных клеток бактерий, общий фон за счет туши черный.

Выявление цитоплазматических включений. При идентификации прокариот имеет значение обнаружение в их цитоплазме скоплений определенных химических веществ (включений): по­лифосфатов — волютина (метахроматина), полисахаридов — глюканов, состоящих из Д-глюкозы и некоторых других соединений.

Обнаружение волютина (по методу Нейссера). Готовят четыре раствора. Раствор А: метиленовый синий —0,1 г, 96%-й эта­нол — 2 мл, ледяная уксусная кислота — 5 мл, вода дистиллиро­ванная — 300 мл. Раствор Б: кристаллвиолет — 1 г, 96%-й эта­нол — 100 мл, вода дистиллированная — 300 мл. Раствор В: ра­створ Люголя. Раствор Г: хризоидин — 1 г, вода дистиллирован­ная — 300 мл.

На фиксированный препарат наливают смесь растворов А и Б в соотношении 2 : 1 на 1 мин, краску сливают. Мазок, не промы­вая, обрабатывают раствором В 1 мин и промывают водой. Затем на препарат наносят раствор Г на 2. 3 мин, промывают водой, высушивают.

Микроскопическая картина: клетки светло-желтые, зерна во­лютина темно-синие.

Обнаружение поли-β-оксимасляной кислоты. Фиксированный на пламени мазок окрашивают 0,3%-м раствором Судана черного «В» в этиленгликоле 5. 15 мин. Краску сливают и препарат, не промывая, подсушивают на воздухе, затем ополаскивают в кси­лоле, высушивают и погружают в 0,5%-й водный раствор сафра­нина на 5. 10 с, промывают водой, подсушивают.

Микроскопическая картина: включения видны на розовом фоне в виде черно-синих зерен.

Обнаружение полисахаридов. На фиксированный препарат на- • носят 1%-й спиртовой раствор алцианового синего на 1 мин (краситель перед использованием разводят водой в соотношении 1 :8). Препарат промывают водой, подсушивают, затем обраба­тывают карболовым фуксином Циля и сразу же промывают во­дой, подсушивают.

Микроскопическая картина: цитоплазма красного цвета, по-лисахаридные включения — голубого.

Методы обнаружения жгутиков у бактерий. Жгутики — структу­ры нитевидной формы, белковой природы, определяют способ­ность клетки к движению в жидкой среде (рис. 17). Количество и характер расположения жгутиков у бактерий различны. У монотрихов один-два жгутика расположены на одном из полюсов клетки (Pseudomonas); у лофотрихов пучок жгутиков расположен полярно или субполярно (Spirillum); у амфитрихов жгутики —на обоих полюсах клетки; у перитрихов — по всей поверхности клетки (Enterobacteriaceae).

Монотрихи двигаются прямолинейно и поступательно, при необходимости могут изменить направление движения на 180° (клетка переворачивается); движение лофотрихов прямолинейное вперед или назад; перитрихи передвигаются хаотично (рис. 18).

Жгутики легко повредить, поэтому препараты готовят с боль­шой осторожностью. Стекла используют чисто вымытые, без ца­рапин. Исследуемая культура должна быть не старше 12. 18 ч. Бактериальную массу осторожно вносят в пробирку с нескольки­ми миллилитрами физиологического раствора. Суспензию вы­держивают 15. 20 мин в термостате, затем петлей каплю жидко­сти из пробирки осторожно переносят на предметное стекло, вы­сушивают, фиксируют на пламени и окрашивают одним из спе­циальных методов.

Метод серебрения по Морозову. Готовят четыре раствора. Ра­створ А: вода дистиллированная — 100 мл, 40%-й раствор форма­лина — 2 мл, ледяная уксусная кислота — 1 мл. Раствор Б: та­нин — 5 г, жидкая карболовая кислота — 1 мл, вода дистиллиро­ванная — 100 мл. Раствор В: нитрат серебра —5 г, дистиллиро ванная вода — 100 мл. К 80 мл этого раствора по каплям добавля­ют аммиак до растворения осадка и образования легкой опалес-ценции. Для окраски раствор серебра разводят дистиллирован­ной водой в соотношении 1 : 10.

На препарат наносят раствор А на 1 мин, затем раствор слива­ют и препарат промывают водой, обрабатывают раствором Б и подогревают 1 мин до отхождения паров, промывают водой, пос­ле чего наносят раствор В и подогревают 1. 2мин до появления темно-коричневой окраски мазка, промывают водой, подсуши­вают.

Микроскопическая картина: тела бактерий угольно-черного цвета, жгутики в виде тончайших волнообразно извитых нитей коричневого или янтарно-черного цвета на прозрачном или жел­товатом однородном фоне.

В повседневной бактериологической работе чаще используют косвенные методы обнаружения жгутиков — выявляют подвиж­ность клеток исследуемой бактериальной культуры.

Препарат «раздавленная капля». На чистое обезжиренное предметное стекло пастеровской пипеткой наносят одну-две капли 18. 20-часовой бульонной культуры, накрывают чистым покровным стеклом. Количество жидкости должно быть доста­точным для заполнения всего пространства под покровным стек­лом. Микроскопируют с объективом х 40 или х 90. Неокрашен­ные бактерии лучше видны при легком затемнении поля зрения, поэтому конденсор целесообразно опустить на 5. 10 мм ниже плоскости предметного столика. Клетки видны в виде светлых или серых «теней», при объективе х 90 четко видны только клет­ки, передвигающиеся в горизонтальной плоскости; бактерии, двигающиеся вертикально, быстро уходят из зоны четкого изоб­ражения.

Препарат «висячая капля». Каплю исследуемой культуры бак­териологической петлей наносят на чистое покровное стекло. Берут специальное предметное стекло с углублением (лункой) в центре, края лунки смазывают вазелином, стекло переворачива­ют лункой вниз и прижимают к покровному таким образом, что­бы капля с бактериями была в центре лунки. Затем предметное стекло резко переворачивают, и капля зависает под покровным стеклом в лунке. При микроскопии бактериальные клетки легче обнаружить по краю капли, где слой жидкости тоньше.

Активное движение бактерий необходимо дифференцировать от броуновского — колебаний клетки под ударами молекул воды и пассивного движения всех клеток с током жидкости в одну сто­рону при наличии уклона.

Помимо перечисленных методов для выявления жгутиков не­редко прибегают к посеву исследуемой культуры уколом в полу­жидкий агар (см. тему 8). Подвижные бактерии растут по всей питательной среде в пробирке, неподвижные — только по уколу.

Метод прямого флуорохромирования бактерий. Для обнаруже­ния некоторых видов бактерий и их отдельных структур препара­ты обрабатывают флуорохромами с последующим изучением в люминесцентном микроскопе. Наиболее широко этот метод применяют для выявления возбудителя туберкулеза.

Готовят следующие растворы: раствор А (фиксатор Никифо­рова): 96%-й этанол, серный эфир —в соотношении 1:1; ра­створ Б: аурамин 00 —0,1 г, дистиллированная вода—100мл, 6%-й раствор фенола — 0,5 мл; раствор В: 96%-й этанол — 90 мл, соляная кислота — 4 мл, хлорид натрия — 4 г, объем доводят дис­тиллированной водой до 100 мл; раствор Г («тушитель»): кислый фуксин—1 г, дистиллированная вода —390мл, концентриро­ванная уксусная кислота — 10 мл.

Мазки из исследуемого материала готовят, как для обычной микроскопии, фиксируют раствором А; окрашивают раствором Б 15 мин, промывают водой, затем обрабатывают раствором В 5 мин, промывают водой, наносят раствор Г на 2 мин, после чего препарат промывают водой и подсушивают.

Микроскопическая картина: при объективе х40 туберкулез­ные бактерии видны в виде золотистых черточек; под объекти­вом х 90 (иммерсионным) на темном фоне обнаруживают светя­щиеся золотисто-зеленые палочки возбудителя.

Демонстративен способ выявления спор бактерий при окра­шивании бриллиант-сульфофлавином, трипафлавином.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Приготовить, окрасить и промикроскопировать препарат бактерий со спорами (В. cereus).

Окрасить одним из способов капсулы P. multocida и про­микроскопировать.

Приготовить препарат «раздавленная капля» из сенного настоя, обнаружить методом микроскопии подвижные клетки бактерий.

На каких тинкториальных особенностях спор и капсул основаны методы их окраски?

Какие прямые и косвенные методы применяют для обнаружения бактери­альных жгутиков?

Какое значение имеет выявление цитоплазматических включений для иден­тификации прокариот?

Источник