ИЗУЧЕНИЕ НЕКОТОРЫХ БИОЛОГИЧЕСКИХ СВОЙСТВ КУЛЬТУРЫ РОДА ALCALIGENES SPP
Хемоорганогетеротрофы, облигатные аэробы, некоторые штаммы способны к нитритному дыханию, образуют оксидазу и каталазу. Оптимальная температура роста 20—37 °С. Образует непигментированные либо серовато-белые, прозрачные до мутных, плоские или слегка выпуклые круглые, гладкие (изредка шероховатые) колонии с неправильным краем на питательном агаре. Не способны использовать углеводы как единственный источник углерода, способны утилизировать ацетат, пропионат, бутират, цитрат, аланин и некоторые другие аминокислоты[2].
Представителей рода Alcaligenes выделяют из кишечного тракта позвоночных, разлагающихся материалов, молочных продуктов, воды и почвы; они могут быть изолированы из дыхательных путей, желудочно-кишечного тракта человека, ран госпитализированных пациентов с ослабленной иммунной системой. Они иногда являются причиной оппортунистических инфекций, включая нозокомиальный сепсис [1] [2].
Некоторые виды Alcaligenes были использованы для промышленного производства нестандартных аминокислот; А. eutrophus также производит биополимер полигидроксибутират [2].
Представителей рода Alcaligenes в последнее время часто включают в состав биологических препаратов, предназначенных для биологической очистки сточных вод, биодиструкции нефти и нефтепродуктов.
Считаем важным вопросом изучение биологических свойств данного объекта.
Материалы и методы. Набор для окраски по Граму, среды Гисса, 0,7% мясопептонный агар, 1,2 % мясопептонный агар (ГРМ), мясопептонный бульон (ГРМ), 3% раствор перекиси водорода, 1 % раствор тетраметилпарафенилендиамина дигидрохлорида. световой микроскоп МБИ-3, бактериологическая петля, цифровая камера-окуляр для микроскопа модель DCM 130, термостат ТС 1/80 СПУ, штативы, пробирки, пробки, предметные стекла, вода дистиллированная, автоклав ВК-75, штамм B 5269 Alcaligenesspp., МВКПМ. Исследование проводили стандартными бактериологическими методами, многократно апробированном сотрудниками кафедры МВЭиВСЭ ФГБОУ ВО Ульяновской ГСХА 8.
Заранее подготовленную суточную культуру Alcaligenesspp. в мясопептонном бульоне, высеяли на мясопептонный агар (ГРМ), в пробирки со средами Гисса, полужидкий агар. Посевы культивировали при 30 ºС сутки, затем учитывали некоторые результаты: реакция сред Гисса, подвижность (рост в полужидком агаре), характер роста на мясопептонном агаре. Затем были поставлены по стандартным методикам тесты на определение способности продуцировать ферменты каталазу и оксидазу, приготовлен мазок и окрашен по Граму.
В результате проведенных исследований, установлено, что исследуемая культура Alcaligenessp. каталазоположительная, оксидазоположительная (рисунок 1). Не ферментирует исследуемые сахара и многоатомные спирты: глюкозу, лактозу, сахарозу, мальтозу, маннит, сорбит, инулин, дульцит (рисунок 2). Подвижна, так как в полужидком агаре виден распространяющийся рост от укола в толщу среды, рост в полужидком ангаре локализуется строго в верхней части ближе к поверхности среды, что говорит о том, что изучаемая культура являются аэробом (рисунок 3).
Рисунок 1 – Результат постановки тестов на наличие ферментов оксидазы и каталазы у культуры Alcaligenesspp.
Рисунок 3 – Колонии культуры Alcaligenesspp. на мясопептонном агаре
В мазке, окрашенном по Граму культура представлена грамотрицательными коккобациллами, располагающиеся попарно и одиночно.
На мясопептонном агаре через сутки культивирования образует глянцевые, непигментированные, серовато-белые, слегка выпуклые круглые, гладкие колонии с неправильным краем, маслянистой консистенции колонии (рисунок 4).
Выводы: в результате проведенной работы, установлено, что штамм Alcaligenesspp. по исследуемым культуральным, морфологическим, тинкториальным и биохимическим свойствам является типичным представителем рода Alcaligenesspp.
Список используемых источников:
1 Stedman’s Medical Dictionary [Электронный ресурс] – Режим доступа: http://www.medilexicon.com/medicaldictionary.php?t=2048
4. Садртдинова Г.Р. Выделение бактериофага бактерий Klebsiellaoxytoca под действием рентгеновского облучения/ Г.Р.Садртдинова, Д.А.Васильев, С.Н.Золотухин // Вестник Ульяновской сельскохозяйственной академии.-№1 (33).- С.76-81.
5. Ефрейторова Е.О., Пульчеровская Л.П., Васильев Д.А. Изучение биологических свойств бактерий serratia marcescen выделенных из пищевых продуктов и объектов окружающей среды / Научный вестник Выпуск №13.г. Дмитровград. Технологический институт филиал ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А.Столыпина» С. 175-180
6. Пульчеровская Л.П. Индикация бактерий рода Citrobacter с помощью реакции нарастания титра фага (РНФ)/ Л.П.Пульчеровская, С.Н.Золотухин, Д.А.Васильев// Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. – 2013. – № 1(21). – С. 60 – 64.
Alcaligenes faecalis Castellani и Chalmers, 1919 emend. Rehfuss и Urban, 2005
Alcaligenes faecalis — грамотрицательная палочковидная бактерия рода Alcaligenes, типовой вид рода. Первоначально изолирована из фекалий, затем была обнаружена в почве и воде.
Известно три подвида Alcaligenes faecalis:
Условно патогенна для человека и животных.
Содержание
Биологические свойства
Морфология
Грамотрицательные палочки или коккобациллы размером 0,5-1,2 × 1-3 мкм, не образуют спор, подвижные за счёт наличия от одного до девяти жгутиков, расположенных перетрихиально.
Культуральные свойства
Патогенность
Применение
Примечания
Ссылки
Полезное
Смотреть что такое «Alcaligenes faecalis» в других словарях:
Alcaligenes faecalis — Alcaligenes faecalis … Wikipedia Español
Alcaligenes faecalis — Taxobox | name = Alcaligenes faecalis regnum = Bacteria phylum = Proteobacteria classis = Beta Proteobacteria ordo = Burkholderiales familia = Alcaligenaceae genus = Alcaligenes species = A. faecalis binomial = Alcaligenes faecalis binomial… … Wikipedia
Alcaligenes faecalis — (син. фекальный щелочеобразователь) вид бактерий рода Alcaligenes; подвижная грамотрицательная, не образующая спор палочка, факультативный аэроб, обычный обитатель кишечника человека; условно патогенен … Большой медицинский словарь
Alcaligenes faecalis — a species isolated from hospital environments and from blood, sputum, and urine specimens. It is a cause of nosocomial septicemia in immunocompromised patients, generally arising from contaminated hemodialysis or intravenous fluids … Medical dictionary
Alcaligenes — xylosoxidans mit fibrinähnlichen Fasern an der Wand eines Venenkatheders (sekundärelektronenmikroskopische Abbildung) Systematik Domäne … Deutsch Wikipedia
Alcaligenes — Alcaligenes … Wikipedia Español
Alcaligenes — A genus of Gram negative, rod shaped, nonfermenting bacteria (family Achromobacteraceae) which are either motile and peritrichous or nonmotile. They are strictly aerobic; some strains are capable of anaerobic respiration in the presence of… … Medical dictionary
Alcaligenes — Taxobox | name = Alcaligenes regnum = Bacteria phylum = Proteobacteria classis = Beta Proteobacteria ordo = Burkholderiales familia = Alcaligenaceae genus = Alcaligenes genus authority = Castellani Chalmers 1919 subdivision ranks = Species… … Wikipedia
МИКРООРГАНИЗМЫ — МИКРООРГАНИЗМЫ. Содержание: Классификация. 107 Таблицы микробов: I. Патогенные бактерии. 115 II. Спирохеты. 179 III. Молочнокислые бактерии. 183 IV. Главнейшие виды бактерий, вызывающих уксуснокислое… … Большая медицинская энциклопедия
По данным из научной литературы, воспалительные процессы внутренних половых органов составляют 62,5% в структуре гинекологической заболеваемости, причем у 9,5% женщин диагностируют гнойные воспалительные заболевания маточных труб и яичников.
Отмечается, что инфекционные заболевания редко вызываются одним возбудителем, и также возрастает роль условно-патогенных возбудителей. Смешанные инфекции составляют примерно 20-30% в структуре инфекционных заболеваний нижнего отдела половых путей, т.е. почти у каждой третьей пациентки выявляется инфекционный процесс, вызванный несколькими возбудителями. В таких случаях клинические проявления заболевания нетипичны и определяются характером взаимодействия между различными возбудителями, приводящим к угнетению или стимуляции одного вида микроорганизма другим. Гнойные воспалительные заболевания придатков матки относят к смешанным полимикробным инфекциям, важнейшими возбудителями которых, по данным Всемирной организации здравоохранения, являются анаэробно-аэробные микроорганизмы (42,5%), Neiseria gonorrhoeae (37,5%), Chlamydia trachomatis (27,5%), Mycoplasma hominis (до 15%) и др. В последние годы именно анаэробной инфекции уделяют особое внимание, поскольку она приобретает реальную значимость в клинической практике. При острых хронических воспалительных заболеваниях придатков матки и околоматочного пространства наиболее часто (82,5%) выделяют облигатные анаэробные микроорганизмы. По данным В.И. Удовиченко и соавт. (1997), 80% женщин из числа гинекологических больных, обращающихся в женскую консультацию с различными видами вульвовагинитов, цервицитов, уретритов, имеют смешанную бактериально-грибково-трихомонадную инфекцию.
Большинство патогенных организмов являются компонентами нормальной микрофлоры человека, этот факт подтверждает эндогенный путь трансмиссии инфекции. Подавляющее большинство воспалительных заболеваний органов малого таза обусловлено собственной условно-патогенной микрофлорой, ведущая роль в развитии которых принадлежит наиболее вирулентным анаэробам, энтеробактериям и коккам (Сидорова, 2007). В микрофлоре влагалища могут присутствовать гнилостные бактерии родов Bacillus, Proteus, Clostridium, Spirochaeta. По данным Wilkins M.et.al, 1984, количество анаэробов преобладает над аэробами в 10 раз в микробиоценозе вагины.
В свете этих данных представляет интерес изучение состава микробных сообществ матки и придатков, включающих в себя как нормальную, условно-патогенную, патогенную микрофлору. Изучение состава микрофлоры УГТ в норме и патологии в динамике может позволить оценить иммунологический, гормональный статус и гомеостаз макроорганизма. Знание микробных взаимоотношений помогают врачу определить истинную причину инфекционного процесса и подбирать адекватную терапию.
Участие в этом сообществе бактерий, относящихся к разным родам и группам, а также простейших делает затруднительным анализ состава этого сообщества традиционными методами, включающими микробиологический метод селективных сред с биохимическими тестами, и генетическими методами. Традиционные методы идентификации микроорганизмов не являются универсальными и требуют часто длительного времени исполнения.
На этом фоне выглядит перспективным выявление специфических веществ (маркеров) — структурных компонентов микроорганизмов — на фоне биологических жидкостях организма человека, и использование их состава для индикации микроорганизмов с помощью метода газовой хроматографии и масс-спектрометрии (ГХ-МС). Методом ГХ-МС с высокой точностью и чувствительностью определяется качественный и количественный состав микробиоценозов в экологии и медицине по жирным кислотам, оксикислотам, альдегидам и стеринам мембран клеток микроорганизмов и их профилям, относящимся к определенным видам сообщества. Метод детектирования микроорганизмов по ЖК-маркерам сродни генетическому (ПЦР, определение последовательности нуклеотидов 16sРНК, FISH и пр.), поскольку состав жирных кислот детерминирован в ДНК и воспроизводится путем репликации участка генома транспортными РНК и последующего синтеза ЖК по матричным РНК (Уотсон, Молек биол клетки, 5т). Поэтому профиль ЖК бактерий является их визитной карточкой или фингерпринтом как отпечатки пальцев людей (Митрука, 1978). Он так же консервативен, как строение ДНК, но и так же подвержен мутациям под действием факторов окружающей среды. Стабильность набора жирных кислот, составляющих клетки микробов, подтверждается исследованиями в области бактериальной палеонтологии, которые показывают, что до глубины времен в 2,5 млрд лет состав ЖК отдельных микробов и пула их жирных кислот в целом остается постоянным (Shekhovtsova, 2003).
Ранее описаны примеры обнаружения микроорганизмов при инфекционных процессах методом ГХ-МС, в том числе для анализа вагинальной микрофлоры [32] [Вестник РАМН, 1996, № 2]. В результате исследование состава жирных кислот вагинального содержимого показано, что его минорные компоненты относятся к микроорганизмам, колонизирующим половые органы в норме и патологии. Оценена их диагностическая значимость при микробной диагностике хронических вагинитов (Крымцева, 2003, Осипов, 2005).
В настоящей работе этот метод применен для исследования инфекционной составляющей патологического процесса эндометрия матки, приводящего к необходимости оперативного решения проблемы вынашивания плода. Целью исследования является выявление и определение в послеоперационном материале численности анаэробов и других, редко культивируемых микроорганизмов, наряду с традиционными объектами клинической микробиологии.
Методы
В основной группе больных исследованы 24 соскобов из полости матки от пациенток, перенесших операции по поводу проблем беременности.
Режим анализа подробно описан ранее (Осипов, 2010; Годков, 2011). Коротко, он состоит в следующем. Материал в количестве 0,04 г подвергали кислому метанолизу в 0,4 мл 1,2 М HCl в метаноле в течение 45 мин при 80°С. В результате реакции метанолиза жирные кислоты, входящие в состав сложных липидов пробы освобождаются в виде метиловых эфиров. Их экстрагировали в 400 мкл гексана, экстракт высушивали и обрабатывали в 20 мкл N,О-бис(триметилсилил)-трифторацетамида в течение 5 мин при 80 °С для получения триметилсилильных эфиров гидрокси-кислот и стеролов. Смесь эфиров в количестве 2 мкл вводили в инжектор ГХ-МС системы HP-5880/5975 Agillent Technologies (США) в модификации «Микробиологический анализатор «МАЭСТРО» ООО Интерлаб (Россия). Для управления и обработки данных использовали штатные программы прибора. Хроматографическое разделение пробы осуществляли на капиллярной колонке с метилсиликоновой привитой фазой HP-5ms Agillent Technologies. Длина колонки 25м, внутренний диаметр 0.25 мм. Режим анализа — программированый, скорость нагрева термостата колонки — 5 град/мин в диапазоне 130 — 320°С.
Площади пиков маркеров на масс-фрагментограммах интегрировали автоматически по заданной программе. Затем эти данные вводили в программу расчета, подготовленную в электронных таблицах EXCEL по технологии масс-спектрометрии микробных маркеров (МСММ, Разрешение Росздравнадзора ФС 2010/038 от 24.02.2010) (Осипов, 2010). Для количественного расчета использовали дейтерированную тридекановую кислоту в качестве внутреннего стандарта и собственный банк данных состава жирных кислот клинических изолятов микроорганизмов.
Ошибка количественных измерений численности микроорганизмов из-за погрешности в подготовке проб и анализа, несоответствия состава жирных кислот чистых культур банка данных и изучаемого сообщества in situ может составлять 20%.
Метод характеризуется следующими показателями:
Результаты
Результаты измерения концентраций микробных маркеров в соскобах матки с последующей реконструкцией микробного сообщества позволили определить состав микст-инфекции в очаге поражения (табл 1).
Таблица 1
Результаты анализа состава локальной микст-инфекции в соскобах из полости матки (N=24). Данные в размерности [клеток/мл х10 5 ]
Из 54 таксонов микроорганизмов, контролируемых в процессе анализа, в итоговую таблицу выведены 48, из которых 38 показывают избыточный рост (инфекцию), Клинически значимыми считали более чем двойное превышение нормы на основании статистического распределения концентрации маркеров микроорганизмов у больных и здоровых людей (Белобородова, 1999). Такие изменения отмечены в таблице затенением клетки. Как видно, инфицирование каждого исследованного материала включает несколько (до двадцати двух, Пожарская, GBT-1559) таксонов микроорганизмов. Это подтверждает тезис литературного обзора о смешанном характере инфекции половых органов женщин. Данные таблицы 1 подтверждают также сформировавшееся представление о доминировании анаэробов. Их доля составляет 70-90% по нашим измерениям и соответствует оценке других авторов. В отличие от предыдущих работ наши измерения носят количественный характер, что позволяет выявить микробные доминанты воспалительного процесса на одной и той же пробе инфицированного материала, а также сопоставлять данные анализов разных пациентов. В данном случае доминантами у большинства пациентов оказались бактерии видов Propionibacterium/Cl. subterminale, представителей родов Eubacterium, Clostridium, Lactobacillus, Ruminococcus. Такой тип инфекции показан на рис 1, где в графическом выражении лучше иллюстрируется количественные изменения относительно нормы и других составляющих микробного сообщества. За неимением возможности оценить уровень колонизации слизистых оболочек полости матки и придатков у здоровых женщин, мы приняли в качестве максимально возможного уровня данные нормы по крови. Тем более, что проба носит явно насыщенный кровяной характер.
По кратности превышения нормы выделяются бактерии кишечной группы (рис 1), для которой наблюдается многократное увеличение концентрации маркеров клостридий группы Clostridium ramosum, групп Eubacterium/Cl. сoccoides, Propionibacterium/Cl. subterminale в соскобе из полости матки по сравнению с их уровнем в крови в норме. Пересчетное значение численности этих микроорганизмов по технологии МСММ достигает уровня 10 9 – 10 10 клеток\мл. Расчетная численность C. ramosum в десяти случаях превышает норму в десять-двадцать раз. Из трудно культивируемых микроорганизмов, которые позволяет выявить масс-спектрометрический метод, следует отметить еще анаэробы Streptococcus mutans, численность которых в 11 пробах более 5 раз выше нормальной. В большинстве случав в составе микст-инфекции присутствуют анаэробные актинобактерии Actinomyces viscosus.
Таблица 2
Число случаев более чем двукратного превышения расчетной численности микроорганизмов соскобах из полости матки по сравнению с нормой крови
№
Микроорганизм
Число клин. значимых
в %
Максимальная численность
Максимальное превышение нормы, раз
Найдено в бакпосеве, КОЕ
1
Streptococcus
3
13
1.1×10 8
4,5
2
Eubacterium lentum
22
96
1.8×10 9
271,3
3
Clostridium hystolyticum
5
22
7×10 7
7,5
4
Peptostreptococcus anaerobius
8
35
9×10 5
9,0
5
Acinetobacter
19
83
9,5×10 6
9,5
6
Pseudomonas aeruginosa
23
100
2,3×10 6
22,0
7
Clostridium propionicum
3
13
3,7×10 8
14,0
8
Stenotrophomonas maltophilia
3
13
2×10 5
2,0
9
Актиномицеты
3
13
3,6×10 7
4,7
10
Streptomyces
6
26
4,9×10 7
7,9
11
Clostridium ramosum
21
91
4.1×10 9
20,5
12
Haemophylus/Burkholderia
23
100
7,6×10 6
76,0
13
Alcaligenes
14
61
3,1×10 7
6,4
14
Rhodococcus
5
22
2,7×10 8
6,3
15
Corineform CDC-group XX
1
4
1.3×10 8
2,1
16
Lactobacillus
6
26
3.1×10 9
4,8
17
Campylobacter mucosalis
1
4
2,2×10 7
2,2
18
Candida
2
9
1.4×10 8
2,5
19
Clostridium 12:0group*
8
35
1.7×10 8
6,8
21
Грибы (Aspergillus-тип)
4
17
7,4×10 7
6,8
22
Prevotella/Burkholderia
1
4
1.3×10 7
3,4
23
Eubacterium/Cl. Coccoides
20
87
1.6×10 10
23,1
24
Staphylococcus
17
74
1.3×10 8
11,2
25
Bifidobacterium
3
13
1.6×10 9
3,1
26
Helicobacter pylory
13
57
1.2×10 7
8,5
27
Clostridium perfringens
11
48
7,3×10 6
6,1
28
Enterococcus
1
4
1.3×10 8
4,5
29
Propionibacterium/Cl. subterminale
19
83
8,7×10 9
19,5
30
Streptococcus mutans (анаэробные)
19
83
5,6×10 8
24,7
31
Herpes
16
70
1.1×10 8
18,1
32
Nocardia asteroides
14
61
4.1×10 8
15,0
33
Ruminicoccus
8
35
6,6×10 8
10,3
35
Blautia coccoides
7
30
1.6×10 7
15,7
36
Kingella
3
13
1.0×10 7
10,0
37
Actinomyces viscosus
9
39
1.5×10 9
12,5
Здесь под C. ramosum подразумевается целая группа клостридий, объединенная общим маркером – специфической ненасыщенной жирной кислотой ω9-гексадеценовой. Это C. inocuum, C. clostridieforme, C. subterminale, C. sordellii, C. septicum, C. paraputrificum, C. celatum, C. cochlearium, C. limosum, C. fallax, C. difficile. Другая группа Clostridium 12:0group имеет общий маркер – додекановую кислоту и (С12:0) и включает виды Clostridium perfringens, С. putrefacience, C. hystolyticum, C. tetani. Свои маркеры имеют клостридии других видов: C. histolyticum, C. coccoides вместе с большой группой родственных эубактерий (род Eubacterium), а также C. propionicum, C. perfringens и C. subterminale вместе с частью видов Propionibacterium. В сумме клостридии составляют около 74% микробного сообщества, то есть, как принято в хирургии, это анаэробная клостридиальная инфекция (АКИ).
По данным реконструкции микробного сообщества эндометрия по маркерам в соскобе из полости матки численность ряда микроорганизмов многократно превышает таковую в крови той же пациентки (Рис 2). Основываясь на данных предыдущих исследований методом МСММ (Лазебник, 2008; Прохорова, 2012) мы полагаем, что имеет место транслокация микроорганизмов кишечника по крови и/или восходящая инфекция из вагины с последующим размножением уже в самом органе – матке.
Рис.2. Сравнение состава реконструкции микробного сообщества в соскобе матки и крови одной и той же пациентки методом МСММ.
Таким образом, применение метода масс-спектрометрии микробных маркеров позволило дополнить картину инфицирования верхних половых органов женщин таксонами, которые оказались доминирующими в микробном сообществе, а также расширить список участников инфекционного процесса. Ими оказались, как и предполагалось другими исследователями, представители кишечной микробиоты. Кроме того, в отличие от предыдущих исследований, мы дали их количественную оценку, показав рейтинговый ряд агентов инфекции и подтвердив доминирование анаэробов родов Propionibacterium, Eubacterium, Clostridium и Bifidobacterium. Вряд ли следует сразу зачислять в патогенны доминантные микроорганизмы кишечной микробиоты: бифидобактерии, лактобациллы,эубактерии и пропионобактерии. Также оставим за скобками клостридии группы C. ramosum, поскольку их роль в организме явно выглядит двоякой. Пока не будем осложнять задачу их транслокацией в полость матки. Попробуем выделить явных патогенов.
Для этого исключим из таблицы перечисленные выше кишечные доминантные бактерии и микробы, которые в норме, и оставим те, что превышают норму, а также те, что часто встречаются в бакпосеве – для возможного сопоставления.
Тогда для соскоба GBT-1559 получим следующую сокращенную таблицу (рис 3):
Рис. 3. Наиболее вероятные агенты инфекции эндометрия, за исключением микробов, доминирующих в микробиоте кишечника.
Это реальные кандидаты в агенты инфекции, которая препятствуют нормальному протеканию беременности.
Если посмотреть в таком ключе остальные анализы соскобов, то будет видно, что везде такими агентами являются обязательно Clostridium perfringens, H. pylori, одна или несколько актинобактерий родов Streptomyces, Nocardia, Pseudonocardia. В примере на рисунке 3 это Actinomyces viscosus, Nocardia asteroids и Rodococcus. В этой группе известные разрушители клеток животных. Они обнаружили себя в амбулаторной практике в качестве агентов, препятствующих оплодотворению и развитию яйцеклетки в плод, в том числе при экстракорпоральном оплодотворении.
Тем не менее, нельзя исключать участие в патогенезе и «хороших» бактерий: лактобацилл, бифидобактерий, пропионобактерий и части клостридий. Можно найти десятки документированных случаев участия в инфекционном процессе любого микроба, обитающего в теле человека. В том числе лактобацилл и бифидобактерий. Особенно лактобациллл. Действительно, по литературным данным они зафиксированы как возбудители при эндокардите, бактериемии, бактериурии, перитонитах, абсцессах и менингитах. Наиболее часто выявляются L.casei и L.rhamnosus (Cannon, 2005). Eubacterium – родственные клостридиям микроорганизмы, являющиеся одними из основных обитателей кишечника. Условные патогены с развитой системой видов и штаммов с универсальными свойствами. Эубактерии участвуют в качестве основных агентов во многих воспалительных процессах и синдромах: воспаления неизвестной этиологии, себорея, атопический дерматит, кахексия, воспаление кишечника, глютеновая энтеропатия, воспаление десен, средиземноморская семейная лихорадка, Yang Xiao-xia’s “mysteriuos disease”, синдром раздраженного кишечника, воспаление легких, бактеремия, хронический синусит, болезнь Крона, периодонтит, артрит, простатит, муковисцидоз, эндометрит, эндокардит, неспецифический вагинит, врожденный порок сердца и другие. Основными функции эубактерий в организме человека являются: образование водорода, высвобождение гистамина, биотрансформация желчных кислот, индуцирование продукции провоспалительных цитокинов и TNF-alfa, а также противовоспалительного цитокина IL-10 (как ЛПС или клеточные токсины Грам+ патогенов) и другие. Патогенность клостридий более известна в клинической практике. Они обладают широким набором экзотоксинов. У C.perfringens их насчитывается двенадцать. С. ramosum обладает близкой активностью, в том числе также может вызывать газовую гангрену, язвенный и некротизирующий колиты. Они известны как агенты септицемии, нефропатии, бактериемии и менингита (Brook, 1995; в Атласе, 2003).
Литература
В этом можно усматривать специфику инфицирования внутренних половых органов, так как при вагинитах в слизистой влагалища их рост хотя и происходит, но не в такой степени. Для вагины более характерна инфекция Clostridium perfringens. При воспалениях, напоминающих по клиническим проявлениям кандидоз, их численность до 30 крат превышают уровень колонизации слизистой оболочки в норме.
Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия, Том 3, N 1, 2001
стр. 39-47
Экологические аспекты чувствительности к антибиотикам анаэробных бактерий
