консервирование патологического материала в ветеринарии
Правила отбора патологического материала для гистологических исследований. Независимая ветеринарная лаборатория ПОИСК
ПРАВИЛА ОТБОРА И КОНСЕРВАЦИИ ПАТОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА
1. Биопсийный материал для гистологического исследования получают из патологически измененного очага: из его центральной зоны и зоны, граничащей с неизменёнными тканями.
2. Иссечение кусочков тканей из органов следует производить только острым инструментом. В противном случае возможна деформация материала и возникновение артефактов. Не рекомендуется получать материал электроинструментами.
3. Иссечённый фрагмент ткани должен быть размером 2х2 см, что обеспечивает его равномерную фиксацию. Больший кусок может зафиксироваться неравномерно, и это отразиться на результатах исследования.
4. В случае, когда биологический материал содержит примеси крови, до помещения в фиксирующую жидкость образец необходимо промыть в физиологическом растворе, а затем, удалив излишки промывной жидкости, поместить в фиксатор.
5. После забора материала его необходимо сразу поместить в ёмкость с 10 % раствором формалина. Нельзя применять формалин более высокой концентрации. Соотношение объема исследуемого материала к объему формалина должно составлять не менее чем 1:10.
КОНЦЕНТРАЦИЯ ФОРМАЛИНА 10 %
Нельзя применять формалин более высокой концентрации.
Соотношение объёма кусочка исследуемого материала к объёму формалина должно быть 1 : 10 или более. На одну часть материала 10 частей раствора формалина или более.
6. Ёмкость должна быть плотно закрыта для предотвращения испарения формалина и высыхания биоматериала.
7. Материал в виде слизи, крови, экссудата или очень мелкий материал, менее 1 мм, не подходит для исследования, поскольку не является полноценным для гистологического описания.
8. Материал в лабораторию сопровождают бланком-направлением
Биопсийный материал. Биопсия желудка, различных участков кишечника и прочих тканей. Материал должен отправляться в хорошем состоянии, кусочки должны быть достаточно большими и не раздавленными манипуляторами.
Фрагменты костной ткани и суставов. Не нужно направлять большие фрагменты костной ткани и суставов. Такой материал трудно поддается обработке декальцинирующих растворов. Гистопатологам, подготавливающим материал для исследования, сложно сориентироваться, из какого конкретно участка необходимо приготовить гистосрез. Есть вероятность получения ложноотрицательного результата. Нужно выделить небольшой кусочек кости из всего удаленного материала размером 2х2 см.
Новообразования больших паренхиматозных органов. Новообразования селезенки, печени и прочих больших паренхиматозных органов необходимо присылать стандартного размера 2х2 см, но не целым органом.
Вы можете открыть в браузере и загрузить на компьютер направление на исследование в формате PDF. Для этого, после открытия документа, нажмите меню «файл» и далее выберете подменю «сохранить как».
Данное направление можно заполнить как прямо на компьютере, так и от руки, предварительно распечатав.
Консервирование патологического материала в ветеринарии
Патматериал берут сразу после смерти животного и доставляют в лабораторию в этот же день. В этом случае консервирование не требуется. Если на доставку уходит больше времени, то для бактериального исследования патматериал консервируют 30% водным р-ром химически чистого глицерина, можно консервировать вазелиновым маслом, 10% р-ром поваренной соли. Небольшие трупы посылают цeлыми в непроницаемой таре. Трубчатые кости посылают очищенными и завернутыми в смоченную 5% р-ром карболовой кислоты марлю.
Кровь, гнои, слизь, экссудат, мочу, желчь, жидкий патматериал для бактериологического и вирусологического исследований посылают в запаянных пастеровских пипетках, стерильных пpобирках или флаконах, закрытых притертыми или стерильными резиновыми пробками.
Пробы слизи берут стерильными марлевыми тампонами.
Кровь у животных берут из яремной вены, ушной раковины или края верхушки уха. У птиц с поверхности гребня или подкрыльцовой вены.
Кишечник перед посылкой в лабораторию освобождают от фекалии и перевязывают концы. Помещают в банку с 30% водным р-ром глицерина.
Во всех случаях патологический материал берут стерильным инструментом и помещают
В стерильную посуду. Она всегда должна быть подготовлена для взятия патматериала
И храниться в соответствующих условиях.
Кровь перед отправкой в лабораторию отстивают, в течение часа при 30-37 С, сгустки от стенки отделяют стальной стерильной спицей, выдерживают сутки при 5-10С
А затем сливают в стерильные пробирки и посылают в лабораторию.
При хранении до 8 С не консервированную сыворотку можно использовать в течении 6 дней.
При необходимости консервируют:
— одной каплей 0,05% фенола на мл сыворотки при постоянном помешивании,
— 2-4% сухой борной кислоты к объему сыворотки,
— путем однократного замораживания или высушивания.
Пробы грубых кормов берут с разных мест с помощью ножниц и пинцета. Одну пробу сухого корма берут с площади 4 кв. м. весом не менее 40 г., а зеленой массы - 100 г. Кaждую отобранную пробу помещают в сухую стерильную стеклянную банку. Трyпы отправляют только с хорошо npоинструктированным нарочным.
Патологический материал должен быть упакован в плотной деревянной или металлической таре. Стеклянная посуда с патматериалом должна быть завернута в целофан, пергаментную бумагу и окутана тканью или мешковиной, смочено фенольным креолином
Или известковым молоком.
На всякий материал составляют сопроводительный документ:
При этом направляем для__________________ патологический материал (перечислить какой, от каких животных, в каком виде)_______________________________________
Принадлежащий (назвать хозяйство)___________________________________________
Клиническая картина болезни_________________________________________________
Дата отправки патматериала__________________________________________________
ФИО и подпись ветврача_____________________________________________________
Способы взятия патматериала у животного. Методы консервирования, упаковки и транспортировки материала. Сопроводительная документация.
Отбор материала для прижизненной диагностики. В зависимости от вида инфекции у клинически больных животных берут соответствующий, специфический для данной болезни материал, соблюдая меры личной безопасности.
Секрет молочных желез служит объектом исследования при тех заболеваниях, при которых возбудитель активно выделяется с молоком (туберкулез, бруцеллез, сальмонеллез, мастит). У коров вымя обмывают теплой водой с мылом, соски обрабатывают 70%-м спиртом Первые струйки молока удаляют, в стерильные сосуды набирают 15. 20 мл секрета из первой и последней порций, полученных при выдаивании.
У овец и коз пробы получают путем пункции цистерны вымени Поле операции готовят у основания соска, стерильной иглой, соединенной со шприцем, делают пункцию, набирают в шприц секрет и переносят его в стерильные пробирки с резиновыми пробками.
Кал берут из прямой кишки в стерильную посуду, которую закрывают плотной крышкой. При обнаружении на стенке прямой кишки слизи, утолщений или других патологических изменений дополнительно делают соскобы; их помещают в отдельную посуду.
Выделения из верхних дыхательных путей и ротовой полости собирают в посуду при естественном истечении или поступают так:
Крылья носа и переднюю часть носовых ходов обмывают водой, после чего выделения собирают стерильными тампонами из глубоких частей носа. Тампоны помещают в стерильные пробирки, содержащие по 0,5 мл стерильного физиологического раствора.
Содержимое синовиальных бурс и абсцессов берут следующим образом. Шерсть выстригают, кожный покров обрабатывают 70%-м спиртом и смазывают настойкой йода. Затем стерильным шприцем с иглой большого диаметра делают пункцию и переносят пунктат в стерильную пробирку с резиновой пробкой.
Материал из язв и ран получают методом соскоба на границе пораженной и здоровой тканей.
Волосы и участки кожи исследуют при кожных заболеваниях. При этом волосы выщипывают, а соскобы с кожи делают скальпелем на границе пораженной и здоровой тканей.
Кровь для серологических исследований берут в разгар заболевания, а в некоторых случаях повторно через 10. 20 дней по 10 мл от двух-трех больных животных в разные пробирки.
Отбор материала для посмертной диагностики. Патологический материал необходимо взять как можно раньше: не позднее 12ч после гибели животного зимой и 6 ч — в теплое время года, законсервировать или отправить в свежем виде. Аутолизированный пат-материал для выделения возбудителя непригоден. Для бактериологического исследования в лабораторию отправляют кусочки кожи, слизистых оболочек, паренхиматозных органов, трубчатую кость, спинной и головной мозг, лимфатические узлы’ пробы жидкости из грудной и брюшной полостей, отрезок кишечника, изолированный лигатурами, плод, плодные оболочки и т. д. Пробы из каждого органа помещают в отдельную посуду и маркируют. В каждом случае необходимо брать тот материал, в котором можно обнаружить характерные для данной болезни изменения.
Для вирусологического исследования материалом могут служить:
Кровь или ее сыворотка, смывы из носоглотки и другие жидкости организма, стенки и содержимое афт, папулы (узелки), везикулы (серозные пузырьки), пустулы (гнойные пузырьки), кусочки головного мозга, печени, легких, селезенки или кусочки других органов и тканей, в которых вирус предполагаемого заболевания содержится в наибольшем количестве.
Для гистологического исследования патматериал берут только от свежих трупов. В лабораторию отправляют кусочки площадью 3. 4 см2, толщиной не более 1 см, при этом следят, чтобы в них вошли пораженные и граничащие с ними неизмененные участки ткани.
Поверхность органа или ткани трупа на участке, из которого предполагают брать пробу, очищают от загрязнений, обеззараживают спиртом, 3%-м раствором фенола или прижигают нагретой металлической пластинкой (шпателем). Материал берут стерильными инструментами и помещают в стерильную посуду (пенициллиновые флаконы, пробирки и другие стеклянные сосуды с резиновыми пробками). Жидкий патматериал (кровь, слизь мочу, желчь и т. д.) можно набирать в одноразовые шприцы или пастеровские пипетки, которые затем с обоих концов запаивают. Кроме того, различные выделения можно посылать в виде мазков или мазков-отпечатков, которые фиксируют на воздухе, заворачивают каждый в отдельности в пергаментную бумагу и маркируют.
Трупы мелких животных, части трупов крупных животных и отдельные органы в свежем виде направляют для исследования в лабораторию только нарочным. Посылаемый материал тщательно упаковывают в плотный деревянный или металлический ящик, чтобы предупредить рассеивание возбудителя по пути следования.
Консервирование патологического материала. Полученные пробы отправляют в лабораторию в свежем виде; если невозможно отправить в течение ближайших 24. 30 ч, то их фиксируют в консерванте.
Патматериал для гистологического исследования консервируют 10%-м водным раствором формалина или 96%-м этиловым спиртом. Объем консерванта должен в 10 раз превышать объем взятого материала.
Материал, предназначенный для бактериологического исследования фиксируют 30%-м химически чистым глицерином (лучше физиологическом растворе) или вазелиновым маслом. Соотношение патматериала и консерванта 1:4 или 1:5. Трубчатую кость и кишечник обычно консервируют поваренной солью.
Пробирки с кровью или сывороткой плотно закрывают стерильными пробками и устанавливают для пересылки в строго вертикальном положении (на лицевой стороне посылки вверху должна быть надпись «осторожно-стекло!» и «Верх»). Зимой кровь и сыворотку упаковывают и пересылают так, чтобы они не замерзали.
Оформление документов на отправляемый материал. На взятый патологический материал ветеринарный врач составляет сопроводительный документ (форма 3). В документе необходимо указать также эпизоотическую ситуацию хозяйства, лечили животное или нет’ если лечили, то какими препаратами, как законсервирован материал; число отправленных упаковок с пробами.
В ______________________________ ветеринарную лабораторию
При этом направляется для ______________________________
Патологический материал (перечислить какой) _____________________
(вид и возраст животного) (название хозяйства, фермы)
Дата заболевания животного _______________________________
Дата падежа ________’_________________________________
Клиническая картина ____________________________________
Данные патологоанатомического вскрытия _______________________
Предположительный диагноз _______________________________
Дата отправления материала ______________________________
Должность ____________________ Подпись ______________
Сыворотка крови должна быть доставлена в ветлабораторию в течение первых суток. И в исключительных случаях не позднее третьего дня после ее взятия. При пересылке сыворотки на большое расстояние, особенно летом ее необходимо консервировать 5%-ным раствором карболовой кислоты на физиологическом растворе из расчета на каждые 9мл сыворотки 1мл раствора карболовой кислоты или 1-2капли раствора на 1мл сыворотки. Сыворотку можно консервировать также высушиванием. Для высушивания сыворотку наносят на фильтровальную бумагу размером 5*5см в количестве 0,4мл и выдерживают в комнате при рассеянном свете до полного высыхания. После этого на каждой бумаге с высушенной сывороткой делают соответствующие записи карандашом и завертывают в пергаментную бумагу (каждую пробу отдельно), а затем упаковывают в конверт и в таком виде отсылают в лабораторию. Для серологического исследования в лабораторию особенно от вблизи расположенных хозяйств можно отправлять и цельную кровь, не отделяя сыворотку, но при условии, что в пути ее не будут встряхивать и она не подвергнется гемолизу.
В хозяйстве я участвовала только при взятии секрета молочных желез для исследования на месте на мастит. Материал для исследования на инфекционные заболевания отправляется в Ленинскую районную станцию по борьбе с болезнями животных ветеринарную лабораторию в г. Видное, Домодедовскую районную станцию по борьбе с болезнями животных, ветеринарно-диагностическую лабораторию. Также я посетила Подольскую городскую станцию по борьбе с болезнями животных, где выдаются ветеринарные справки на продукцию, составляется план вакцинаций и контролируется его выполнение, выдаются направления на утилизацию биоотходов.
В клинике я присутствовала при взятии венозной крови, мочи и смывов со слизистых рта и прямой кишки.
Для крови и в хозяйстве и в клинике хранятся специальные пробирки, для исследования сыворотки – с активатором свертывания(тромбин), для цельной крови – с ЭДТА для предотвращения свертывания. Для смывов – пробирки Эппендорфа, куда помещается ватная палочка в физрастворе.
Пробирки и баночки подписываются (фамилия и инициалы владельца, кличка животного) и хранятся в холодильнике до прихода курьера. На каждый образец заполняется сопроводительный бланк. Все анализы, кроме дерматологических, проводятся в ветеринарных лабораториях (Веттест), курьер доставляет патматериал в сумке-холодильнике.
Для анализа ПЦР на кальцивироз у кошки производился смыв из ротовой полости ватной палочкой, смоченной в физрастворе. На инфекционный гастроэнтерит ПЦР – смыв из прямой кишки. Мочу и кал животных обычно собирают сами хозяева в специальные емкости.
Консервирование патологического материала в ветеринарии
Глава 13. ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ ПАТОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА И ПЕРЕСЫЛКИ ЕГО ДЛЯ ЛАБОРАТОРНОГО ИССЛЕДОВАНИЯ
(Извлечение из Правил Главного управления ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР, утвержденных 24 июня 1971г.)
При необходимости определить или подтвердить причину заболевания или гибели животных (включая птиц, зверей, пчел, рыб), при подозрении на инфекционную или инвазионную болезнь или на отравление ветеринарный врач (фельдшер) обязан взять соответствующий патологический материал и направить его в ветеринарную лабораторию для исследования.
Во всех случаях взятия и пересылки материала специалист обязан руководствоваться изложенными ниже правилами, а также соответствующими инструкциями по борьбе с болезнями животных.
Взятие и пересылка патологического материала для бактериологического и вирусологического исследования. Патологический материал берут стерильными инструментами в стерильную посуду. Поверхность органа (ткани), от которого будут брать патологический материал, на месте разреза обжигают над пламенем или прижигают нагретой металлической пластинкой.
Патологический материал берут как можно раньше после смерти животного, особенно в теплое время года. При начавшемся разложении материал для исследования негоден.
В лабораторию материал отправляют в неконсервированном виде. Если доставить в лабораторию в течение ближайших 24—30 ч материал невозможно, то его консервируют.
Для бактериологического исследования патологический материал (органы или их части) консервируют в 30%-ном водном растворе химически чистого глицерина. Воду предварительно стерилизуют кипячением или автоклавированием в течение 30 мин. В качестве консерванта можно применять также стерильное вазелиновое масло. Материал заливают консервирующей жидкостью в количестве, в 4—5 раз превышающем его объем.
Материал, предназначенный для вирусологического исследования, консервируют в 30—50%-ном растворе химически чистого глицерина на физиологическом растворе поваренной соли. Физиологический раствор предварительно стерилизуют в автоклаве при 120 °С в течение 30 мин.
Небольшие трупы животных (поросята, ягнята, телята), а также трупы мелких животных посылают целыми в непроницаемой таре.
Трубчатые кости направляют целыми с неповрежденными концами. Предварительно их тщательно очищают от мышц и сухожилий и завертывают в марлю или полотно, смоченные дезинфицирующей жидкостью (5%-ный раствор карболовой кислоты). Кости можно также посыпать натрия хлоридом (поваренной солью) и завернуть в полотно или марлю.
Кишечник перед посылкой для бактериологического и вирусологического исследований освобождают от содержимого, а концы его перевязывают. На исследование посылают части кишечника с наиболее характерными патологическими изменениями. Помещают в банки с 30—40%-ным водным раствором глицерина или насыщенным водным раствором натрия хлорида. Объем консервирующей жидкости должен в 5—7 раз повышать объем взятого материала.
Кал для исследования отправляют в стерильных стаканах, пробирках или банках, которые закрывают пергаментной бумагой. От трупов животных кал можно послать в отрезке невскрытого кишечника, завязанного с обоих концов. В лабораторию кал должен быть доставлен не позднее 24 ч после взятия.
При посылке для исследования участков кожи берут наиболее пораженные части ее размером 10 х 10 см и кладут в стерильную, герметически закрывающуюся посуду.
Кровь, гной, слизь, мочу, желчь и другой жидкий патологический материал для бактериологического и вирусологического исследований посылают в запаянных пастеровских пипетках, стерильных пробирках или во флаконах, плотно закрытых стерильными резиновыми пробками.
Кроме того, выделения из различных полостей, естественных отверстий и др., предназначенные для микроскопического исследования (для обнаружения в них микробов, кровепаразитов и для определения лейкоцитарной формулы), посылают в виде мазков.
Предметные стекла кипятят в течение 10—15 мин в 1—2%-ном водном растворе соды, затем тщательно промывают чистой водой, насухо вытирают и помещают в раствор спирта и эфира, взятых в равных частях, где и хранят до употребления.
Кровь берут из вены ушной раковины или края верхушки уха, у птиц — с поверхности гребня или из подкрыльцовой вены. Шерсть на месте взятия крови выстригают, кожу протирают ватными тампонами, смоченными сначала спиртом и затем эфиром. Инструменты (иглы, скальпель) должны быть стерильными.
Первую каплю крови удаляют стерильной ватой (исключение делается при исследовании крови на пироплазмидозы, когда для мазка берут первую каплю крови), а следующую свободно выступившую каплю берут на предварительно подготовленное предметное стекло быстрым и легким прикосновением к капле поверхностью стекла. Затем стекло быстро поворачивают вверх каплей и удерживают между пальцами левой руки в горизонтальном положении. К левому краю капли прикасаются под углом 45° шлифованным краем другого предметного (или покровного) стекла. Как только капля равномерно распределится по ребру этого стекла, его быстро проводят по поверхности предметного стекла слева направо, не доводя до края на 0,5—1 см. Ширина мазков должна быть уже предметного стекла. Для каждого нового мазка берут свежую каплю крови.
Готовые мазки крови высушивают только на воздухе. В холодное время года мазки делают в теплом помещении или на стеклах, подогретых на крышке теплого стерилизатора.
Метод фиксации мазков зависит от цели исследования.
Правильно приготовленные мазки крови должны быть тонкими, равномерными и достаточной длины. На высушенных мазках и отпечатках острым предметом делают надпись с указанием номера или клички животного и даты приготовления мазка.
Мазки из тканей, гноя, органов и различных выделений готовят путем размазывания материала на предметном стекле стерильной палочкой или ребром другого предметного стекла до тонкого слоя. Частицы органов плотной консистенции, твердые узелки, а также вязкий материал заключают между двумя предметными стеклами и растирают. Затем стекла разъединяют, растаскивая их в противоположные стороны в горизонтальном направлении. Получаются два довольно тонких мазка. Иногда делают препараты-отпечатки. Для этого вырезанный острым скальпелем кусочек органа захватывают пинцетом и свободной поверхностью кусочка делают на стекле несколько тонких отпечатков.
Взятие материала для патологогистологического исследования. Материал берут от свежих трупов или убитых животных не позднее 12, а летом — 2—3 ч после смерти от тех органов или тканей, где обнаружены патологические изменения, а также из главнейших паренхиматозных органов. Из разных участков патологически измененных органов (тканей) вырезают небольшие тонкие (не более 1— 2 см толщиной) кусочки. Вместе с пораженными участками ткани захватывают и граничащую с ней нормальную ткань. При иссечении кусочка учитывают микроскопическое строение (структуру) того или иного органа (ткани). Так, кусочки из почки, надпочечника, лимфатического узла берут с таким расчетом, чтобы попадали оба слоя — корковый и мозговой; из головного мозга — серое и белое вещество; из селезенки — белую и красную пульпу; из легкого — части органа с бронхами и плеврой. Из сердца берут несколько кусочков: из мышцы правого и левого желудочков, правого и левого предсердий, папиллярных мышц и области клапанов. Из всех органов при иссечении захватывают и их капсулу. Из разных отделов желудочно-кишечного тракта вырезают небольшие кусочки размером 2 х 3 см и перед погружением в фиксирующую жидкость их растягивают на картон и прошивают белыми нитками.
Взятый материал помещают в фиксирующую жидкость (10%-ный водный раствор нейтрального формалина), объем которой в 4—5 раз превышает объем взятого материала. В холодное время года во избежание промерзания при пересылке материал, профилированный в формалине, перекладывают в 30—50%-ный раствор глицерина (приготовленный на 10%-ном растворе формалина), в 70%-ный спирт или в насыщенный раствор натрия хлорида.
Если формалина нет, то в качестве фиксирующей жидкости используют 96%-ный этиловый спирт или ацетон. При применении спирта толщина кусочков не должна превышать 0,5 см. Для гистохимических исследований патологический материал можно фиксировать также в жидкости Карнуа (спирт абсолютный — 60 мл, хлороформ — 30 мл и ледяная уксусная кислота — 10 мл) или в жидкости Буэна (концентрированная пикриновая кислота — 15 мл, формалин — 5 мл, ледяная уксусная кислота — 1 мл). Фиксирующую жидкость меняют каждые сутки до тех пор, пока она не станет прозрачной. Оптимальная температура фиксации 37 °С.
Патологический материал фиксируют в стеклянной или в крайнем случае в глиняной посуде.
На банку с кусочками органов и тканей наклеивают этикетку, на которой указывают номер или кличку животного и кому принадлежит, а внутрь ее опускают кусочек плотной бумаги или картона с написанным на нем простым (не химическим) карандашом номером животного.
Помещать в посуду несколько объектов исследования от разных животных можно только при том условии, если каждый из них завязывают в марлю вместе с отдельной этикеткой.
Упаковка и пересылка патологического материала. Трупы мелких животных, части трупов крупных животных и отдельные органы в свежем (нефиксированном) виде отправляют для исследования в лабораторию только с нарочным. Посылаемый материал, особенно от животных, подозрительных по заболеванию инфекционной болезнью, тщательно упаковывают в плотный деревянный или металлический ящик, чтобы предупредить возможность рассеивания возбудителя инфекции в пути. Перед упаковкой материал завертывают в холст или мешковину, смоченную дезинфицирующим раствором (фенольным креолином, лизолом, известковым молоком), обертывают целлофаном или полиэтиленовой пленкой и кладут в ящик со стружками, мякиной или опилками.
Части органов, жидкости, отправляемые в лабораторию почтой в фиксированном или консервированном виде, помещают в герметически закупоренную стеклянную посуду с притертой стеклянной, пластмассовой, резиновой или корковой пробкой. Пробку закрепляют проволокой или бечевкой и заливают менделеевской замазкой (сургучом, смолкой, парафином или воском), чтобы укупорка была непроницаемой для жидкости. Укупоренную посуду вкладывают в прочно сбитый ящик, плотно обкладывают ватой, паклей, стружками, опилками или другим упаковочным материалом.
При пересылке почтой или с нарочным патологического материала от животных, подозрительных по заболеванию инфекционной болезнью, или явно инфицированного материала упаковка должна гарантировать доставку материала в целости и исключить возможность рассеивания возбудителей инфекции. На лицевой стороне посылки вверху должны быть надписи: «Осторожно — стекло» и «Верх».
Стеклянную посуду, в которой заключен посылаемый материал с подозрением на наличие особо опасных болезней (сап, сибирская язва, эмфизематозный карбункул, бруцеллез, туляремия, перипневмония крупного рогатого скота, чума крупного рогатого скота, чума свиней, псевдочума птиц, ящур, бешенство), обязательно упаковывают в металлическую коробку, которую запаивают, пломбируют или опечатывают, а затем упаковывают еще в деревянный ящик.
Если такой материал отправляют с нарочным, его кладут в стеклянную посуду, герметически закупоривают и помещают в деревянный ящик.
Взятие и отправка патологического материала при подозрении на отравление. Подозрение на отравление могут вызвать следующие признаки:
а) характерный запах содержимого желудка (горькоминдальный, чесночно-хлороформенный и т. п. при исключении запаха примененных лекарств);
б) окраска содержимого желудка: желтая (от азотной и пикриновой кислот, солей хрома), зеленая, синяя (от солей меди) или иного цвета;
в) кровянистое содержимое желудка;
г) подозрительные включения в содержимом желудка — белые кристаллы сулемы и стрихнина, нерастворившиеся белые кристаллы мышьяка;
д) набухшие, увеличенные, дряблые, легко разрывающиеся серо-желтой окраски и т. п. слизистая оболочка желудка, почки, сердце;
е) поражения начальных отделов пищеварительного тракта (ротовой полости, пищевода, желудка);
ж) изменение цвета и консистенции крови.
При подозрении на отравление в лабораторию направляют материал от трупов павших животных для химического и гистологического исследований. Одновременно с целью определения источника отравления посылают все корма (по 1 кг корма каждого вида), которые скармливали животным. Обязательно посылают остатки кормов из кормушки.
Для химического исследования в лабораторию посылают в отдельных банках следующий материал:
а) часть пищевода и пораженную часть желудка с содержимым (в количестве 0,5 кг), а от крупного и мелкого рогатого скота и верблюдов — часть пищевода, сычуга и небольшое количество содержимого из разных мест сычуга, рубца.
Желудок и его содержимое берут в следующем порядке.
При вскрытии трупа после осмотра внутренних органов перевязывают лигатурами пищевод и двенадцатиперстную кишку вблизи стенки желудка (по две лигатуры) и перерезают между ними. Желудок извлекают и кладут в кюветы, а затем вскрывают. Содержимое желудка предварительно (не выбирая из желудка) перемешивают (нельзя использовать металлические предметы), после чего осторожно, чтобы не загрязнить, берут часть его;
б) отрезок тонкого кишечника (длиной до 40 см) в наиболее пораженной части вместе с содержимым (до 0,5 кг);
в) отрезок толстого кишечника ^длиной до 40 см) в наиболее пораженной части вместе с содержимым (до 0,5 кг);
г) часть печени (0,5—1 кг) с желчным пузырем (от крупных животных), печень целиком (от мелких животных);
е) мочу в количестве 0,5 л;
ж) скелетную мускулатуру в количестве 0,5 кг.
Кроме того, в зависимости от особенностей предполагаемого отравления дополнительно посылают:
а) при подозрении на отравление через кожу (путем инъекции) — часть кожи, клетчатки и мышцы из места предполагаемого введения яда;